A glükóz-glicerin alapú természetes eutektikus oldószerek alkalmazhatóságának vizsgálata fenolos vegyületek és koffein extrakciójára zöld kávé (Coffea arabica) babból

Szerzők

DOI:

https://doi.org/10.17108/ActAgrOvar.2026.67.1.90

Kulcsszavak:

klorogénsav, mély eutektikus oldószerek, zöld kávébab, fenolos vegyületek

Absztrakt

Zöld kávébabból (Coffea arabica) származó fenolos vegyületek kinyerésére természetes mélyeutektikus oldószer (NDES) keveréket vizsgáltak. A dehidratált, finomra őrölt GCB-ket vízzel, 50 %-os vizes etanollal és NDES-sel (glükóz és glicerin, 1:1 M) extrahálták 30 °C-on 30, 60 és 90 percig rázós inkubációs módszerrel. A folyamatot 50 °C-on 30 percig megismételték. A teljes fenoltartalmat (TPC) Folin-Ciocalteu-teszttel mérték. A klorogénsavak (3-, 4- és 5-koffeoilkinsav) és a koffein mennyiségét HPLC-PDA-val határozták meg. 30 °C-on a legmagasabb TPC-értéket (48,7 ± 0,6 mg GAE/g) a NDES 30 perces kivonatában mérték, ami összehasonlítható (P > 0,05) a NDES 60 perces (47,4 ± 0,1 mg GAE/g) és 90 perces (48,6 ± 1,1 mg GAE/g) kivonataival. A legmagasabb klorogénsav-tartalom (52,4 ± 0,6 mg/g) az 50 %-os etanolos, 30 perces extrakcióban volt, ami hasonló (P > 0,05) más etanolos kivonatokhoz, valamint a NDES 60 és 90 perces kivonatokhoz. A koffeintartalom (12,1 ± 0,2 mg/g) az 50 %-os etanolos, 30 perces kivonatban érte el a csúcsot, ami hasonló (P > 0,05) a legtöbb más kivonathoz, kivéve a NDES 30 perces kivonatot (11,3 ± 0,3 mg/g). Az 50 °C-on végzett NDES 46,9 ± 0,5 mg/g TPC-t, 48,6 ± 0,7 mg/g klorogénsavat és 11,1 ± 0,2 mg/g koffeint eredményezett, ami nem különbözött szignifikánsan a 30 °C-on kapott eredményektől. Ezek az eredmények azt jelzik, hogy a glükóz-glicerin NDES egy ígéretes, környezetbarát oldószer a fenolos vegyületek GCB-kből történő extrakciójához, alternatívát kínálva az 50 %-os etanollal szemben.

Hivatkozások

Acidri, R., Sawai, Y., Sugimoto, Y., Handa, T., Sasagawa, D., Masunaga, T., Yamamoto, S., & Nishihara, E. (2020). Phytochemical Profile and Antioxidant Capacity of Coffee Plant Organs Compared to Green and Roasted Coffee Beans. Antioxidants, 9(2), 93. https://doi.org/10.3390/antiox9020093

Atondo-Echeagaray, W. A., Torres-Martínez, B. d. M., Vargas-Sánchez, R. D., Torrescano-Urrutia, G. R., Huerta-Leidenz, N., & Sánchez-Escalante, A. (2025). Green Coffee Bean Extracts: An Alternative to Improve the Microbial and Oxidative Stability of Ground Beef. Resources, 14(6), 95. https://doi.org/10.3390/resources14060095

Chandimala, U. R., & Ajtony, Zs. (2025). Application of chlorogenic acid in dairy product enrichment/fortification – a review. LWT-Food Science & Technology, 232, 118416. https://doi.org/10.1016/j.lwt.2025.118416

Chandimala, U. R., Sik, B., & Ajtony, Zs. (2025). An Experimental Design for the Analysis of 5-Caffeoylquinic Acid (5-CQA) in Ethanolic Extracts of Hibiscus (Hibiscus sabdariffa L.) Flower. Georgikon for Agriculture, 29, 1-16. https://doi.org/10.70809/6561

Farah, A., De Paulis, T., Trugo, L. C., & Martin, P. R. (2005). Formation of chlorogenic acids lactones in roasted coffee. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 53, 1105-1113.

Farah, A. & Donangelo, C. M. (2006). Phenolic compounds in coffee. Brazilian Journal of Plant Physiology, 18(1). https://doi.org/10.1590/S1677-04202006000100003

Furia, E., Beneduci, A., Malacaria, L., Fazio, A., La Torre, C., & Plastina, P. (2021). Modeling the Solubility of Phenolic Acids in Aqueous Media at 37 °C. Molecules, 26(21), 6500. https://doi.org/10.3390/molecules26216500

Hijo, A. A. C. T., Alves, C., Farias, F. O., Peixoto, V. S., Meirelles, A. J. A., Santos, G. H. F., & Maximo, G. J. (2022). Ionic liquids and deep eutectic solvents as sustainable alternatives for efficient extraction of phenolic compounds from mate leaves. Food Research International, 157, 111194. https://doi.org/10.1016/j.foodres.2022.111194

Khalili-Moghadam, S., Hedayati, M., Golzarand, M., & Mirmiran, P. (2023). Effects of green coffee aqueous extract supplementation on glycemic indices, lipid profile, CRP, and malondialdehyde in patients with type 2 diabetes: a randomized, double-blind, placebo-controlled trial. Frontiers in Nutrition, 10. https://doi.org/10.3389/fnut.2023.1241844

Loukri, A., Sarafera, C., Goula, A. M., Gardikis, K., & Mourtzinos, I. (2022). Green extraction of caffeine from coffee pulp using a deep eutectic solvent (DES). Applied Food Research, 2(2). https://doi.org/10.1016/j.afres.2022.100176

Munyendo, L. M., Njoroge, D. M., Owaga, E. E., & Mugendi, B. (2021). Coffee phytochemicals and post-harvest handling—A complex and delicate balance. Journal of Food Composition and Analysis, 102, 103995. https://doi.org/10.1016/j.jfca.2021.103995

Okeke, U. J., Micucci, M., Mihaylova, D., & Cappiello, A. (2025). Synthesis and Application of Natural Deep Eutectic Solvents (NADESs) for Upcycling Horticulture Residues. Horticulturae, 11(4), 439. https://doi.org/10.3390/horticulturae11040439

Platzer, M., Kiese, S., Herfellner, T., Schweiggert-Weisz, U., & Eisner, P. (2021). How Does the Phenol Structure Influence the Results of the Folin-Ciocalteu Assay? Antioxidants, 10(5), 811. https://doi.org/10.3390/antiox10050811

Priftis, A., Stagos, D., Konstantinopoulos, K., Tsitsimpikou, C., Spandidos, D. A., Tsatsakis, A. M., Tzatzarakis, M. N., & Kouretas, D. (2015). Comparison of antioxidant activity between green and roasted coffee beans using molecular methods. Molecular Medicine Reports, 12(5), 7293-7302. https://doi.org/10.3892/mmr.2015.4377

Ruesgas-Ramón, M., Figueroa-Espinoza, M. C., & Durand, E. (2017). Application of Deep Eutectic Solvents (DES) for Phenolic Compounds Extraction: Overview, Challenges, and Opportunities. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 65(18). https://doi.org/10.1021/acs.jafc.7b01054

Rumiyati, S., Kartikaningsih, H., Setijawati, D., & Nursyam, H. (2024). Qualitative Analysis of Caulerpa racemosa Chlorophyll Extract in Natural Deep Eutectic Solvent (glucose-glycerol) using FTIR. International Journal of Agriculture and Biosciences, 13(3), 295-300. https://doi.org/10.47278/journal.ijab/2024.121

Sik, B., Székelyhidi, R., Lakatos, E., & Ajtony, Zs. (2024). Using natural deep eutectic solvents for the extraction of antioxidant compounds from cornelian cherry (Cornus mas L.) fruits. Green Analytical Chemistry, 11, 100154. https://doi.org/10.1016/j.greeac.2024.100154

Sudeep, H. V., & Prasad, S. K. (2021). Supplementation of green coffee bean extract in healthy overweight subjects increases lean mass/fat mass ratio: A randomized, double-blind clinical study. SAGE Open Medicine, 9. https://doi.org/10.1177/20503121211002590

Taheri, A. & Jafari, S. M. (2019). Gum-based nanocarriers for the protection and delivery of food bioactive compounds. Advances in Colloid and Interface Science, 269, 277-295. https://doi.org/10.1016/j.cis.2019.04.009

Taweekayujan, S., Somngam, S., & Pinnarat, T. (2023). Optimization and kinetics modeling of phenolics extraction from coffee silverskin in deep eutectic solvent using ultrasound-assisted extraction, Heliyon, 9(7). https://doi.org/10.1016/j.heliyon.2023.e17942

Tripathi, S., Singh, S., Mishra, N., & Mishra, N. (2025). The Impact of Solvent Polarity on the Phenolic and Antioxidant Capacity of Green Coffee Beans (Robusta Species) Extracts. Current Research in Nutrition and Food Science 13(2). http://dx.doi.org/10.12944/CRNFSJ.13.2.27

Downloads

Megjelent

2026-06-29

Hogyan kell idézni

Chandimala, U. R., Sik, B., & Ajtony, Z. (2026). A glükóz-glicerin alapú természetes eutektikus oldószerek alkalmazhatóságának vizsgálata fenolos vegyületek és koffein extrakciójára zöld kávé (Coffea arabica) babból. Acta Agronomica Óváriensis, 67(1), 90–104. https://doi.org/10.17108/ActAgrOvar.2026.67.1.90

Folyóirat szám

Évf. 67 szám 1 (2026)

Rovat

Kísérletes tanulmányok

License

Creative Commons License

This work is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.